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鸡白介素-4(IL-4)ELISA试剂盒试剂盒仅供研究使用 预期应用 实验原理 2. 标准品(冻干品):2瓶,每瓶临用前以样品稀释液稀释至1ml,盖好后静置10分钟以上,然后反复颠倒/搓动以助溶解,其浓度为10 ng/mL,做系列倍比稀释后,分别稀释成5 ng/mL,2.5 ng/mL,1.25 ng/mL,0.62 ng/mL,0.31 ng/mL,0.16 ng/mL,0.08ng/mL其原液直接作为最高标准浓度,样品稀释液直接作为标准浓度0 ng/mL,临用前15分钟内配制。 如配制5 ng/ml标准品:取0.5ml 10 ng/ml的上述标准品加入含有0.5ml样品稀释液的Eppendorf管中,混匀即可,其余浓度以此类推。 3. 样品稀释液:1×20ml/瓶。 4. 检测稀释液A:1×10ml/瓶。 5. 检测稀释液B:1×10ml/瓶。 6. 检测溶液A:1×120ul/瓶(1:100)临用前以检测稀释液A1:100稀释。稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(每孔100ul),实际配制时应多配制0.1-0.2ml。如1ul检测溶液A加99ul检测稀释液A的比例配制,轻轻混匀,在使用前一小时内配制。 7. 检测溶液B:1×120ul/瓶(1:100)临用前以检测稀释液B1:100稀释。稀释方法同检测溶液A。 8. 底物溶液:1×10ml/瓶。 9. 浓洗涤液:1×30ml/瓶,使用时每瓶用蒸馏水稀释25倍。 10. 终止液:1×10ml/瓶(2N H2SO4)。 标本的采集及保存 1.细胞培养物上清:请离心后收集上清,并将标本保存于-20℃,且应避免反复冻融。 2.血清:标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融。 3.血浆:可用EDTA或肝素作为抗凝剂,标本采集后30分钟内于2 - 8° C 1000 x g离心15分钟,或将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融。 注:标本溶血会影响最后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。 1. 加样:分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液100ul,余孔分别加标准品或待测样品100ul,注意不要有气泡,加样将样品加于酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀,酶标板加上盖或覆膜,37℃反应120分钟。 为保证实验结果有效性,每次实验请使用新的标准品溶液。 2. 弃去液体,甩干,不用洗涤。每孔加检测溶液A工作液 100ul(取1ul检测溶液A加99ul检测稀释液A的比例配制,轻轻混匀,在使用前一小时内配制),37℃,60分钟。 3. 温育60分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板3次,每次浸泡1-2分钟,350ul/每孔,甩干。 4. 每孔加检测溶液B工作液(同检测A工作液) 100ul,37℃,60分钟。 5. 温育60分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板5次,每次浸泡1-2分钟,350ul/每孔,甩干。 6. 依序每孔加底物溶液90ul,37℃避光显色(30分钟内,此时肉眼可见标准品的前3-4孔有明显的梯度兰色,后3-4孔梯度不明显,即可终止)。 7. 依序每孔加终止溶液50ul,终止反应(此时蓝色立转黄色)。终止液的加入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性,底物反应时间到后应尽快加入终止液。 8. 用酶联仪在450nm波长依序测量各孔的光密度(OD值)。 在加终止液后15分钟以内进行检测。 注: 1. 每次实验留一孔作为空白调零孔,该孔不加任何试剂,只是最后加底物溶液及2NH2SO4。测量时先用此孔调OD值至零。 2.为防止样品蒸发,试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内,酶标板加上盖或覆膜。 3. 未使用完的酶标板或者试剂,请于2-8℃保存。标准品、检测溶液A工作液、检测溶液B工作液请依据所需的量配置使用。请勿重复使用已稀释过的标准品、检测溶液A工作液或检测溶液B工作液。 4. 建议检测样品时均设双孔测定,以保证检测结果的准确性。 计算 注意事项 2. 一次加样时间最好控制在5分钟内,如标本数量多,推荐使用排枪加样。 3. 请每次测定的同时做标准曲线,最好做复孔。 4. 如标本中待测物质含量过高,请先稀释后再测定,计算时请最后乘以稀释倍数。 5.在配制标准品、检测溶液工作液时,请以相应的稀释液配制,不能混淆。 6.底物请避光保存。 检测范围: 说明 2.有效期:6个月 3.浓洗涤液会有盐析出,稀释时可在水浴中加温助溶。 4.刚开启的酶联板孔中可能会含有少许水样物质,此为正常现象,不会对实验结果造成任何影响。 5.中、英文说明书可能会有不一致之处,请以英文说明书为准。 |
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