一、 实验目的
通过本实验学习PCR反应的基本原理,掌握PCR的基本操作技术以及琼脂糖凝胶电泳技术。
二、 实验原理
PCR用于扩增位于两端已知序列之间的DNA区段,即通过引物延伸而进行的重复双向DNA合成。基本原理及过程如下:
PCR循环过程中有三种不同的事件发生:(1)模板变性;(2)引物退火;(3)热稳定DNA聚合酶进行DNA合成。
1.变性:加热使模板DNA在高温下(94-95℃)变性,双链间的氢键断裂而形成两条单链,即变性阶段。
2.退火:在体系温度降至37-65℃,模板DNA与引物按碱基配对原则互补结合,使引物与模板链3’端结合,形成部分双链DNA,即退火阶段。
3.延伸:体系反应温度升至中温72℃,耐热DNA聚合酶以单链DNA为模板,在引物的引导下,利用反应混合物中的4种脱氧核苷三磷酸(dNTP),按5’到3’方向复制出互补DNA,即引物的延伸阶段。
上述3步为一个循环,即高温变性、低温退火、中温延伸3个阶段。从理论上讲,每经过一个循环,样本中的DNA量应该增加一倍,新形成的链又可成为新一轮循环的模板,经过25~30个循环后DNA可扩增106~109倍。
典型的PCR反应体系由如下组分组成:DNA模板、反应缓冲液、dNTP、MgCl2、两条合成的DNA引物、耐热DNA Taq聚合酶。
三、实验材料及相关试剂
基因组DNA,基因特异性引物,PCR扩增相关试剂,等
四、实验步骤
1.模板DNA的抽提:实验一所得的水稻基因组DNA。
2.PCR操作 (在冰上操作):
(1)PCR反应混合液的配制:反应体系25 µL, 在无菌的0.2 mL离心管中按下列操作程序加样:
反应物 | 加样顺序 | 体积/µL | 终浓度 |
ddH2O | 1 | 17.3×n | |
10 x Buffer | 2 | 2.5×n | 1 x |
25 mmol/L MgCl2 | 3 | 1.5×n | 1.5 mmol/L |
10 mmol/L dNTP | 4 | 0.5×n | 200 µmol/L |
10 µM上游引物 | 5 | 1×n | 0.4 µmol/L |
10 µM下游引物 | 6 | 1×n | 0.4 µmol/L |
DNA Taq聚合酶 | 7 | 0.2×n | 1 U |
(2)将反应混合液混匀, 然后每个PCR管中分装24 µL反应混合液,再加1 µL模板DNA,最后加1滴石蜡油,防止水分蒸发, 然后稍离心。